使用说明：
1. 对于贴壁细胞或细胞涂片：
a. 用PBS或HBSS洗涤1次。
b. 如果细胞贴得不牢，可以干燥样品使细胞贴得更牢。
c. 用4%多聚甲醛或上海金畔生物科技有限公司生产的免疫染色固定液(P0098)固定细胞30分钟。
d. 用PBS或HBSS洗涤1次。
e. 加入上海金畔生物科技有限公司生产的免疫染色强力通透液(P0097)或含0.3% Triton X-100的PBS，室温孵育5分钟。
f. 用PBS或HBSS洗涤1次。
g. 在上海金畔生物科技有限公司生产的内源性过氧化物酶封闭液(P0100A)或PBS配制的0.3%过氧化氢溶液(0.3% H₂O₂ in PBS)中室温孵育20分钟，以灭活切片内源的过氧化物酶。随后用PBS或HBSS洗涤3次。
h. 转步骤5。
2. 对于悬浮细胞或细胞悬液：
a. 收集细胞(不超过200万细胞)，用PBS或HBSS洗涤1次。
b. 涂片，使细胞粘附在载玻片上。可以干燥样品使细胞贴得更牢，或使用适当的粘附试剂。
c. 用上海金畔生物科技有限公司生产的免疫染色固定液(P0098)或4%多聚甲醛固定细胞30分钟。
d. 用PBS或HBSS洗涤1次。
e. 用加入上海金畔生物科技有限公司生产的免疫染色强力通透液(P0097)或含0.3% Triton X-100的PBS，室温孵育5分钟。
f. 用PBS或HBSS洗涤1次。
g. 在上海金畔生物科技有限公司生产的内源性过氧化物酶封闭液(P0100A)或PBS配制的0.3%过氧化氢溶液(0.3% H₂O₂ in PBS)中室温孵育20分钟，以灭活切片内源的过氧化物酶。随后用PBS或HBSS洗涤3次。
h. 转步骤5。
3. 对于石蜡切片：
a. 二甲苯中脱蜡5-10分钟。换用新鲜的二甲苯，再脱蜡5-10分钟。无水乙醇5分钟。90%乙醇2分钟。70%乙醇2分钟，蒸馏水2分钟。
b. 滴加20μg/ml不含DNase的蛋白酶K(推荐使用上海金畔生物科技有限公司的ST532/ST533 蛋白酶K(20mg/ml)，用P0106 免疫染色洗涤液或10mM Tris-HCl pH7.4-7.8稀释1000倍即为20μg/ml不含DNase的蛋白酶K)，20-37℃作用15-30分钟(不同组织的 最佳作用温度和时间需自行摸索)。
c. 用PBS或HBSS洗涤3次。注意：这一步必须把蛋白酶K洗涤干净，否则会严重干扰后续的标记反应。
d. 在上海金畔生物科技有限公司生产的内源性过氧化物酶强力封闭液(P0100B)或PBS配制的3%过氧化氢溶液(3% H₂O₂ in PBS)中室温孵育20分钟，以灭活切片内源的过氧化物酶。随后用PBS或HBSS洗涤3次。注：请勿在用PBS配制的3%过氧化氢溶液中孵育过长时间，否则会出现过氧化氢导致的DNA断裂 ，从而产生假阳性。
e. 转步骤5。
4. 对于冷冻切片：
a. 用上海金畔生物科技有限公司生产的免疫染色固定液(P0098)或4%多聚甲醛固定细胞30分钟。
b. PBS或HBSS洗涤2次，每次10分钟。
c. 加入上海金畔生物科技有限公司生产的免疫染色强力通透液(P0097)或含0.3% Triton X-100的PBS，室温孵育5分钟。
d. 在上海金畔生物科技有限公司生产的内源性过氧化物酶封闭液(P0100A)或PBS甲醇配制的0.3%过氧化氢溶液(0.3% H₂O₂ in PBS)中室温孵育20分钟，以灭活切片内源的过氧化物酶。随后用PBS或HBSS洗涤3次。
e. 转步骤5。
5. 配制生物素标记液：
参考下表配制适量的生物素标记液，需充分混匀。注意：配制好的生物素标记液必须一次使用完毕，不宜冻存。

6. 样品的生物素标记：
a. 在样品上加50μl TUNEL检测液，37℃避光孵育60分钟。注意：50μl TUNEL检测液适合涂片、切片或96孔板、48孔板、24孔板或12孔板的一个孔，如果是6孔板中的一个孔TUNEL检测液宜使用100μl。如果待检测的样品为涂片、切片或在24孔板、12孔板或6孔板中，可以使用防蒸发膜，或自行尝试使用自封袋或者其它适当材料自行裁剪成比孔略小的圆形塑料片，滴加TUNEL检测液后覆盖在样品上，可以防止TUNEL检测液蒸发，并且使TUNEL检测液均匀覆盖样品。自行裁剪圆片时需要连着圆片突出一个角或连着一条，并将圆形之外的突出部分折叠，方便染色结束后利用突出部分顺利取出圆片。也可以用PAP Pen圈出一个区域进行染色。孵育时需注意在多余的孔和多孔板的空隙中加入适量水以保持湿润，从而尽量减少TUNEL检测液的蒸发。
b. 用PBS或HBSS洗涤1次，滴加0.1-0.3ml标记反应终止液，室温孵育10分钟。
c. 用PBS或HBSS洗涤3次。
7. Streptavidin-HRP工作液和DAB显色液的配制：
a. Streptavidin-HRP工作液的配制：
参考下表配制适量的Streptavidin-HRP工作液，需充分混匀。注意：配制好的Streptavidin-HRP工作液必须一次使用完毕，不宜冻存。

b. DAB显色液的配制：
按照每个样品使用0.2-0.5ml显色液的比例配制适量DAB显色液。等体积混合适量DAB显色液A和DAB显色液B，充分混匀后即为DAB显色液。注意：配制好的DAB显色液必须一次使用完毕，不宜冻存。
8. 样品的显色：
a. 在样品上加50μl Streptavidin-HRP工作液，室温孵育30分钟。注意：50μl Streptavidin-HRP工作液适合涂片、切片或96孔板、48孔板、24孔板或12孔板的一个孔，如果是6孔板中的一个孔Streptavidin-HRP工作液宜使用100μl。如果待检测的样品为切片、涂片或在24孔板、12孔板或6孔板中，可以使用防蒸发膜，或自行尝试使用自封袋或者其它适当材料自行裁剪成比孔略小的圆形塑料片，滴加Streptavidin-HRP工作液后覆盖在样品上，可以防止Streptavidin-HRP工作液蒸发，并且使Streptavidin-HRP工作液均匀覆盖样品。自行裁剪圆片时需要连着圆片突出一个角或连着一条，并将圆形之外的突出部分折叠，方便染色结束后利用突出部分顺利取出圆片。也可以用PAP Pen圈出一个区域进行染色。孵育时需注意在多余的孔和多孔板的空隙中加入适量水以保持湿润，从而尽量减少Streptavidin-HRP工作液的蒸发。
b. 用PBS或HBSS洗涤3次。
c. 滴加0.2-0.5mlDAB显色液，室温孵育5-30分钟或根据显色情况孵育适当时间。注：如果显色很强可以短于5分钟 即停止显色，如果显色很弱，可以适当延长显色时间，甚至显色过夜。
d. 用PBS或HBSS洗涤3次。
e. 染色效果可参见图1。
f. 选做(本步骤可以不做)：用苏木素染色液(C0107)或甲基绿染色液(C0115)进行细胞核染色。随后用PBS或HBSS洗涤3次。
g. 直接进行观察，或用95%乙醇脱水5分钟，再用100%乙醇脱水2次，每次约3分钟，再用二甲苯透明2次，每次5分钟，随后封片观察。 染色结果可参考图2：

图2. 小鼠卵巢切片TUNEL检测DAB显色效果。棕色为TUNEL染色阳性的凋亡细胞，蓝色为被苏木素染色的细胞核。本图仅作参考，不同的样品 不同的检测条件，实际获得的结果可能和上图有较明显的差别。

常见问题：
1. 出现非特异性显色。
a. 有些细胞或组织，例如平滑肌细胞或组织，nuclease或polymerase的酶活性水平较高，易导致出现非特异性的显色。解决方法是， 取细胞或组织后立即固定并且要充分固定，以阻止这些酶导致假阳性。
b. 使用了不适当的固定液，例如一些酸性固定液，导致出现假阳性。建议采用推荐的固定液。
c. TUNEL检测反应时间过长，或TUNEL检测反应过程中反应液渗漏，细胞或组织表面不能保持湿润，也可能出现非特异性染色。注意控制反应时间，并确保TUNEL检测反应液能很好地覆盖样品。
2. 染色背景很高。
a. 支原体污染。请使用支原体染色检测试剂盒检测是否为支原体污染。支原体染色检测试剂盒(C0296)可以向上海金畔生物科技有限公司订购。
b. 高速分裂和增殖的细胞，有时也会出现细胞核中的DNA断裂。
c. TUNEL反应过强。可以用试剂盒提供的TdT酶稀释液稀释TdT酶2-5倍后再按照说明书操作。稀释后的TdT酶需当日使用。
d. 细胞内的过氧化物酶灭活不充分会导致很多细胞呈现阳性染色，改进过氧化物酶的灭活方法，例如延长灭活时间等会有所帮助。
e. 所使用的溶液有DNA酶污染。DNA酶污染导致的随即切割会导致产生一定的背景并干扰检测。把溶液高压灭菌可以有效灭活各种常见 DNA酶。
3. 标记效率低。
a. 使用乙醇或甲醇固定会导致标记的效率较低。
b. 固定时间过长，导致交联程度过高。此时宜减少固定时间。
c. 贴壁细胞如果使用药物诱导凋亡，会使发生凋亡细胞的贴壁性会减弱，所以建议在凋亡诱导结束后，用可以对多孔板进行离心的离心机1000g离心5分钟，然后再吸除培养基并用PBS洗涤。如果没有适合的离心机，请注意操作轻缓，防止发生凋亡的细胞在洗涤时洗去。后续整个操作也需要轻缓。
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