产品优势
1. 操作简易、快捷、高效（得率高）。
2. 纯度高：沉淀致密，去杂干净。
3. 含有指示剂，可直观判断操作过程中样本裂解程度。
注意事项
1. 细菌培养时间一般为15小时左右，如接种量大则应减少培养时间，过度培养会降低质粒质量甚至导致质粒 DNA 突变。
2. 使用前应将全部RNase A溶液加到Solution I中混合均匀，2-8℃可稳定保存6个月；若溶液II、III 产生沉淀，应在使用前置于37℃下溶解沉淀；同时并注意溶液 I，II 和 III 的用量比例，若细菌量增大，需按比例放大这些溶液的使用量。
3. 随菌体增多应延长 Solution II 的作用时间，直至溶液成粘稠透明状，但时间过长会导致质粒 DNA 变性。
4. 质粒的产量跟细菌量、质粒拷贝数、质粒大小和操作规范程度密切相关。
5. 纯化的质粒在电泳中表现为2-3条带有时甚至为4-6条带均属正常，未分开的环套质粒，易被误判为基因组 DNA。

操作步骤
1. 柱平衡：向离心吸附柱中加入 400 μl Buffer BL，静止 1 min，室温下 12,000 rpm 离心 1 min，弃除收集管中的废液，将离心吸 附柱重新放回收集管中。注意：请使用当天处理过的吸附柱。
2. 取 1-5 ml（如果是低拷贝质粒可以收集更多菌液）过夜培养的菌液，室温 12,000 rpm 离心 1 min，尽量将上清去除干净。注意：根据菌液的浓度决定取液量，浓度高时取 1.5 ml 菌液离心即可，浓度低时可多收集一次。
3. 加入 250 ul Solution I，旋涡震荡或用移液器充分吹打使菌体重悬均匀，呈现出均匀浑浊的棕红色。注意：菌体沉淀一定要悬浮均匀，如有未彻底悬浮的菌块会影响裂解，导致提取的质粒浓度及纯度降低。
4. 加入 250 ul Solution II，温和颠倒混匀使菌体完全裂解，直到溶液变成清亮、粘稠的紫红色。注意：不可剧烈震荡，以免造成基因组 DNA 片段的污染，所用时间不要超过 5 min，以免质粒受到破坏，如未完全变得清亮，可能是菌体太多，可增加 Solution II的用量，在后续的操作中 Solution III的用量也要相应增加。
5. 加入 350 ul Solution III，立即温和颠倒混匀，可见红黄相间的沉淀物产生，继续混匀直到完全变为黄色，室温静置 2 min，然后 12,000 rpm 离心 5 min。注意：Solution III 加入后应立即混合，避免产生局部沉淀，如果上清中还有紫色漂浮物，说明复性不充分，继续混匀至溶液颜色完 全变为澄清的黄色。
6. 小心将上清液转移到离心吸附柱中，静置 2 min，让质粒 DNA 与吸附柱中的硅胶膜充分结合。12,000 rpm 离心 30 sec，弃收集管中滤液。
7. 可选步骤：向吸附柱中加入 500 ul Buffer WB1，12,000 rpm 离心 30 sec，弃收集管中滤液。注意：如果宿主菌是 endA-，如 DH5α 或 TOP10，此步骤可省略。如果宿主菌是 endA+，如 TG1、BL21、HB101、JM101 等，此步骤不可省略，因这些宿主菌含有大量的核酸酶，易降解质粒。如果提取低拷贝质粒也推荐采用此步骤。
8. 加入 500 ul Buffer WB2，室温 12,000 rpm 离心 30 sec，弃收集管中滤液。注意：Buffer WB 2 为浓缩液，初次使用按要求加入无水乙醇，用后应立即盖紧瓶盖，以防酒精挥发。
9. 重复步骤 8 一次。
10. 室温 12,000 rpm 离心 2 min，甩干残留液体。注意：此步不能省略，否则残留乙醇会影响质粒的后续使用。
11. 将离心吸附柱置于一个新的 1.5 ml 塑料离心管（自备）中，加入 50 ~ 100 ul 的洗脱液 Buffer EB，室温放置 2 min。12,000 rpm 离心 1 min，离心管底溶液即质粒 DNA。注意：为增加洗脱效率，可将洗脱液在 60℃预热。如需使用去离子水洗脱，可用 NaOH 调整其 pH 值在 7.0 – 8.5 之间，为了增加质粒回收率，可将得到的溶液重新加入到离心管中，室温放置 2 min，再次离心收集。

低拷贝或大质粒（>10 kb）提取
如果所提质粒为低拷贝质粒，或大于 10 kb 的大质粒，或提取农杆菌质粒，或提取革兰氏阳性菌质粒，应加大菌体使用量，使用 5-10 ml 过夜培养物，同时按照比例增加 Solution I、II、III 的用量，洗脱液 Buffer EB 应在 60℃水浴预热，在吸附和洗脱时可以适当延 长时间，以增加提取效率。其它步骤相同。