高分子量基因组 DNA：使用 Ocean NanoTech 的 Blood gDNA 试剂盒从全血中分离出高分子量的高分子量基因组 DNA。3 x 350 µL 全血/供体通过 Ocean NanoTech 试剂盒进行处理，并以 100 µL 洗脱。500 纳克纯化的 DNA 在 1% 琼脂糖凝胶/TAE 上与 GeneRuler™1kb Plus 阶梯（Thermo Scientific）一起电泳；最上面的 DNA 梯带是 20,000 bp。

来自全血的高纯度基因组 DNA，不含 RNase：使用 Ocean NanoTech 的 Blood gDNA 试剂盒从全血中分离的高纯度基因组 DNA。3 x 350 µL 全血/供体通过 Ocean NanoTech 试剂盒进行处理，并以 100 µL 洗脱。通过分光光度法分析洗脱的DNA以确定纯度比和DNA浓度。

来自全血的无抑制剂基因组 DNA：分离的基因组 DNA 的 SPUD 分析表明不存在共纯化的抑制剂。3 x 350 µL 全血/供体通过 Ocean NanoTech 试剂盒进行处理，并以 100 µL 洗脱。如 Analytical Biochemistry, 2006 Apr 15;351(2):308-10 中详述的，对 100 ng 洗脱的 DNA 进行了抑制 SPUD 扩增子扩增的能力分析。观察到的 Cq 与分离的 DNA 模板相对于 SPUD 阳性对照的均匀性表明分离的 DNA 不含 PCR/qPCR 抑制剂。

基因组靶标的成功qPCR扩增：对分离的基因组DNA的qPCR分析表明，基因组靶标的成功扩增和检测。3 x 350 µL 全血/供体通过 Ocean NanoTech 试剂盒进行处理，并以 100 µL 洗脱。使用 ABI TaqMan™ β-肌动蛋白 qPCR 测定法测定标称 20 ng 洗脱的 DNA（基于 Nanodrop 分析）。标准曲线跨越了 100 – 0.032 ng（27,600 – 8.8 个基因组当量）的人类 DNA。测定效率计算为 102%。

分离的基因组 DNA 的酶促修饰：使用 Ocean NanoTech 的 Blood gDNA 试剂盒对从全血中分离的基因组 DNA 进行限制性消化。3 x 350 µL 全血/供体通过 Ocean NanoTech 试剂盒进行处理，并以 100 µL 洗脱。1 µg 纯化的 DNA 在 37°C 下用 BamHI、BglII 和 BamHI+BglII 消化 30 分钟。此后限制性产物在1％琼脂糖凝胶/TAE上电泳1小时。

从分离的基因组和线粒体 DNA 进行长距离 PCR ：使用 Ocean NanoTech 的 Blood gDNA 试剂盒对从全血中分离的基因组 DNA 进行长距离 PCR。3 x 350 µL 全血/供体通过 Ocean NanoTech 试剂盒进行处理，并以 100 µL 洗脱。使用 TaKaRa LA Taq® 和 (A) 7.3 kb 人葡糖脑苷脂酶片段和 (B) 8.2 kb 线粒体 NADH-泛醌氧化还原酶链 1 (MT-ND1) 片段的引物，通过 PCR 扩增 20 ng 纯化 DNA。 PCR 产物在 1% 琼脂糖凝胶/TAE 上电泳 1 小时。这些高分子量目标的成功 PCR 扩增突出了分离 DNA 的结构完整性和我们的试剂盒分离线粒体 DNA 的能力。

与商业血液稳定剂管的兼容性： 血液基因组 DNA 试剂盒可用于从商业血液稳定剂管中分离不含抑制剂的 gDNA。将捐献者血液抽取到 3 种市售血液稳定产品中，并在室温下储存 4 天。使用标准方案通过 Ocean NanoTech 试剂盒处理来自试管的 350 µL 等分试样。作为稳定过程的一部分，DNA/RNA Shield™ 管也没有使用 Ocean NanoTech 裂解缓冲液进行处理，因为 DNA/RNA Shield™ 裂解细胞。如分析生物化学，2006 年 4 月 15 日；351(2)：308-10 中详述的，测定了从每次分离中洗脱的 100 ng DNA 抑制 SPUD 扩增子扩增的能力。观察到的 Cq 与分离的 DNA 模板相对于 SPUD 阳性对照的均匀性表明分离的 DNA 不含 PCR/qPCR 抑制剂。

性能与其他商用产品的对比： Ocean NanoTech的Blood gDNA试剂盒大大优于其他基于磁珠的血液gDNA分离试剂盒。来自同一供体的血液被吸入 K2-EDTA 管中，并使用试剂盒所需的输入血量通过每个试剂盒处理。分离的 DNA 以 100 µL 洗脱，并通过 NanoDrop 分析和 Qubit 分析评估纯度。计算每个试剂盒的总产量（基于 Qubit 测量）和作为血液输入量函数的产量。所有值均来自三个生物学重复。